1、菌種保存管能保存霉菌及酵母菌嗎？
答：可以。對于霉菌等真菌需培養7 天進行保存，而酵母菌需培養三天將孢子洗脫下來進行保存，保存管中的小瓷珠可以作為介質來吸附孢子和菌絲，相當于砂土保存法中砂土作為載體起到的作用。
2、所有的菌都能保存嗎？如果不是的話，什么樣的菌可以保存？什么樣的菌不可以保存？
答：可以。菌種保存的原理是預防或減緩DNA 復制時自發突變導致菌種退化，因此要創造代謝不活潑的狀態，而菌種保存時使菌種進入休眠態(孢子、芽孢)，并創造干燥、低溫、缺氧、缺營養的環境，創造的環境越接近此狀態，所保存的菌種的時間就越長，所以從原理上講，所有菌種都可用這種方法保存， 但需要注意的是，苛刻菌(如流感嗜血桿菌、腦膜炎萘瑟氏菌)等特殊細菌保存時，需-80℃或更低溫度保存，才可以做到更長期的保存。
3、能用菌種保存管一直保存菌株嗎？
答：溫度越低，保藏效果越好。從目前的試驗數據及實際保存效果來看，-20℃可保存1-5 年，-80℃或液氮中可保存5-10 年，不同菌種及不同的保存溫度保存時間會有所不同(例如：大腸、沙門等常規細菌-20℃我們目前可以保存到6年)。但需要注意的是所保存的菌種需每年抽檢進行生化特征的鑒定，確定菌株無變異。
4、菌種保藏時為什么要進行分離純化？
答：分離純化后才能獲得單一菌株，單一菌株進行菌種保藏才有意義，防止菌種交叉污染和變異，這也是菌種保存的基本原則。
5、菌種保存管對于平板來說，對挑選菌落個數有要求嗎？還是將整個平板的菌落全部刮入管中？
答：對于要保存的細菌一般是要進行2-3 次的純化，要保證一個平板上的菌是由單一菌落傳代而來的，所以在細菌保存的過程中，為了保證制備的菌懸液可以達到3-4MCF，是可以將整個平板的的細菌全部刮到管中的，如果平板長的比較滿一般半個平板就夠用，具體用量也根據菌種的不同有所差異，如霉菌、酵母菌在保存時，不適合用濁度法。
6、對于液體培養基培養的純菌，是否也可以用咱們的菌種保存管？如果可以的話，怎么操作？
答：是可以用的，如果液體培養基能保證是純菌的話，可以直接離心，棄掉上清，然后把保存管中液體吸進去充分混勻，然后再轉移到菌種保存管中，整個過程要注意無菌操作。不過，一般菌種保存管選擇平板菌落進行保存，因為液體培養基中有雜菌是不易觀察出來的。
7、為什么在菌種保存時，要上下顛倒？為什么不能旋搖？
答：上下顛倒，可使菌懸液充分混勻，菌株充分、均勻地吸附到小瓷珠上，旋搖不利于菌懸液充分混勻,反而會使菌株全部沉淀于管底。
8、為什么在使用時要將管內的液體盡可能多的吸出？
答：吸出液體可避免反復凍融形成的冰晶對菌株的損傷，加快復蘇的過程，因此，要盡可能的將與菌種混勻后的保存液吸凈。而常用的甘油法，在復蘇的過程中需用水浴鍋快速溶解，在此過程中，對菌株傷害較大。
9、在使用后，菌種保存管的保存環境？需要-80℃冰箱嗎？
答：本公司菌種保存管采用的是低溫冷凍保存法，因此，使用后，需放置低溫環境，如-20℃的低溫培養箱、-80℃或液氮中保存，而且溫度越低，保存效果越好。用戶需根據菌種的保存要求選擇具體保存溫度。
10、為什么說，如果有條件的話，菌種保存管置于-80 冰箱或液氮中？
答：因為，貯存在-70℃以下低溫中能減少冰晶形成，可極大降低冰晶形成對細菌的傷害，同時可為被保存的菌種創造更低的代謝環境，從而延長細菌保存的時間。
11、為什么在取用菌株時，操作過程要求快速？
答：菌種保存復蘇的原則，要求慢凍快融，之所以要求快速，是因為在菌種復蘇的過程中, 長時間的溶解過程會對所保存的菌種造成損傷，而我們經過改良的保存方法大程度的避免復蘇所造成的影響，但我們還是建議遵循菌種的保存復蘇原則，保證所復蘇菌種的復蘇率。
12、將菌株反復凍存，到底對菌株有什么影響？
答：低溫會使菌株細胞內的水分形成冰晶，從而引起細胞結構尤其是細胞膜的損傷。細胞體積大者一般要比較小者對低溫更為敏感，而無細胞壁者則比有細胞壁者敏感。如果放到低溫(不是一般冰箱)進行冷凍時，會產生冰晶，冰晶呈針狀，極易導致細菌的嚴重損傷。用電鏡觀察，可見細菌的核膜上有大量針尖樣小孔，當從低溫下移出并開始升溫時，冰晶又會變大，故反復凍存，會對菌株造成極大損傷。
13、為什么有時候菌種的保存效果不佳？
答：1、可能是由于保存后未將保存液吸盡，反復凍融形成冰晶損傷菌株細胞，影響了菌株活性。
2、確定所保存的菌種是否為對數生長期的菌種，我們建議普通菌種保存為18小時內的新鮮菌種，而霉菌需要待孢子出現后保存其孢子。
14、該產品能否用于菌種的運送，如果可以在什么條件下運送？
答：就目前試驗數據而言，我們建議可主要用于普通細菌的短期運送，對于厭氧菌在運送時讓其處于厭氧環境下如：厭氧培養箱，2-8℃運送不超過5 天。另外需要說明的是如弧菌屬和綠膿桿菌需要常溫運送，其對2-8℃溫度極其敏感。
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